Die ScratchMaker Scratch-Assay-Platten verfügen über glasbodengeätzte Photorezeptoren für standardisierte, reproduzierbare Wundheilungsassays. Erhältlich im 6-, 24- und 96-Well-Format. Benötigt ein Fluoreszenzmikroskop als Lichtquelle – in einem Abstand von 3 cm zwischen Licht und Platte. Kein Waschschritt erforderlich.
Die Methode, mit der Sie eine Wunde erzeugen, bestimmt, welche Biologie Sie untersuchen können. Nicht alle Kratztestplatten sind gleich – die Art der Wunde spielt eine Rolle. Studien zur Zellmigration. konsequent aufzeigen, dass die physiologische Relevanz der entscheidende Unterschied zwischen Insert-basierten und photochemischen Wundmodellen ist.
"Die Zellen, wenn sie sich zur Wunde bewegen, schließen nicht nur die Wunde, sondern verdauen auch die Zellkörper, die sich auf dem Weg befinden. Wir glauben daher, dass dies die physiologische Situation, die Echtzeitsituation, die auf biologischer Ebene stattfindet, sehr genau nachahmt."
— Forscherfeedback, zenCELL owl Live-Demo · Juni 2026Rund 12.000 PubMed-Einträge beinhalten Scratch-Assays – die meisten davon werden manuell mit Pipettenspitzen durchgeführt. Die interassay-Variabilität ist die am häufigsten genannte Einschränkung in Publikationen zu Wundheilungsassays.
Die Kratzer bei manuellen Pipetten variieren erheblich je nach Anpressdruck des Bedieners, Winkel und Pipettenspitzen-Größe, was eine Quantifizierung unzuverlässig macht.
Die Ergebnisse sind nicht direkt zwischen Experimenten, Zeitpunkten oder Bedienern vergleichbar – dies vernichtet die statistische Aussagekraft.
Der Mangel an Standardisierung ist ein häufiger Grund für die Ablehnung von Studien zur Migration und Wundheilung im Peer-Review-Verfahren.
96 manuelle Kratzer pro Platte sind zeitaufwendig und fehleranfällig – Hochdurchsatz-Screening ist nicht realistisch.
Die Pipettenspitze reißt Zellen am Wundrand physisch auf, was zu unkontrollierten Trümmern und Stressreaktionen führt, die Migrationsmessungen verfälschen.
Jeder Brunnen wird in einem leicht unterschiedlichen Moment und mit einer leicht unterschiedlichen Handbewegung eingeritzt – Timing und Technik driften über eine Platte hinweg.
Unsere Scratch-Assay-Platten verfügen über glasbeschichtete Böden mit Photosensibilisator als Einwegverbrauchsmaterialien, kombiniert mit wiederverwendbaren Präzisionslichtmasken. Erfordert ein Fluoreszenzmikroskop als minimale Lichtquelle.
Ideal für erste Experimente, Zelllinien-Screenings und qualitative Migrationsstudien mit größeren Zellkulturvolumina.
Der Standard für Scratch-Assay-Platten. Optimal für quantitative Migrationsstudien, Medikamententests und Wirkstoff-Screening.
Für Screening-Studien mit vielen gleichzeitigen Bedingungen. Maximale Durchsatzleistung bei konsistenter Reproduzierbarkeit über alle Wells hinweg.
Standard-Mikroplatte mit einzeln verklebten, photosensibilisatorbeschichteten Glasböden. Optimiert für saubere, reproduzierbare photochemische Wundränder in Kratztest-Applikationen.
Präzisionsgefertigte Lichtmaske, die direkt unter die Mikrotiterplatte geklemmt wird. Definiert den IR/VIS-Belichtungsbereich präzise – identische Position in jedem Well, in jedem Experiment. Wiederverwendbar über viele Experimente hinweg.
Alles, was Sie für Ihren ersten reproduzierbaren Scratch-Assay benötigen. Lichtmaske + Scratch-Assay-Platten in einer Box, PDF-Protokoll inklusive. Starten Sie noch heute, kein Setup erforderlich.
Sie müssen nicht alle Wells auf einmal freilegen. Verwenden Sie nur die Wells, die Ihr aktuelles Experiment erfordert – legen Sie sie einzeln und schrittweise frei. Solange Sie unter sterilen Bedingungen arbeiten, bleiben die übrigen Wells intakt und können in nachfolgenden Experimenten verwendet werden. Dies macht jede Scratch-Assay-Platte zu einer kosteneffizienten Ressource für mehrere unabhängige Assays.
Die meisten Labore beginnen mit den reinen Scratch-Assay-Platten und entwickeln sich schrittweise zum vollständigen ScratchMaker-Workflow. Finden Sie heraus, wo Sie stehen – und wie der nächste Schritt typischerweise aussieht.
Von konfluenten Monolagen zu definierten photochemischen Wunden – ein standardisierter Workflow in vier Schritten. ScratchMaker-Scratch-Assay-Platten sind mit 6-, 24- und 96-Well-Formaten kompatibel.
Säen Sie Ihre Zellen in der entsprechenden Dichte auf die ScratchMaker-Scratch-Assay-Platte aus. Inkubieren Sie die Zellen, bis eine Konfluenz von ≥95 % erreicht ist – je nach Zelllinie dauert dies in der Regel 16–24 Stunden.
Befestigen Sie die ScratchMaker-Lichtmaske an der Unterseite der Wellplatte. Die Maske dient als Halterung und Lichtleiter – sie definiert exakt, welcher Bereich jedes Wells belichtet wird.
Platzieren Sie jede Vertiefung für 60 Sekunden unter Ihrer Fluoreszenzmikroskop-Lichtquelle in einem Abstand von 3 cm zwischen Licht und Platte. Das Licht aktiviert den Photosensibilisator → Singulett-Sauerstoff → lokalisierter Zelltod in der definierten Zone. Arbeiten Sie Vertiefung für Vertiefung durch die Platte.
Die Scratch Assay Platte ist unmittelbar nach der Lichteinwirkung bereit. Kein Waschschritt erforderlich. Direkt unter Ihr Mikroskop oder in das zenCELL owl einsetzen und mit der Live-Cell-Überwachung beginnen.
Ein direkter Vergleich der drei gängigsten Ansätze für Wundheilungs-Assays – und warum photochemische Scratch-Assay-Platten die physiologisch relevantesten Daten liefern.
| Merkmal | ScratchMaker Platten | Pipettenspitze | Ibidi Einsatz |
|---|---|---|---|
| Wundart | Photochemischer Zelltod | Mechanische Ruptur | Lücke – keine Zellzersetzung |
| Physiologische Relevanz | Hoch – simuliert in vivo | Mäßig | Gering – keine Trümmerbeseitigung |
| Entfernung von Zelltrümmern | Ja, definierte Zone | Ja, unkontrolliert | Nein |
| Schadensrisiko einfügen | Keine Einfügung | Keine Einfügung | Ja – nach über 2 Stunden |
| Reproduzierbarkeit von Scratch | Hoch | Niedrig (±30–60%) | Hoch |
| 6-Well-Platte | Ja | Ja | Ja |
| 24-Well-Platte | Ja | Ja | Ja |
| 96-Well-Platte | Ja | Mühsam | Ja |
| Anforderung an ein Mikroskop | Fluoreszenzmikroskop (min.) · 3 cm Abstand | Irgendein | Irgendein |
| Teilprothesenverwendung | Ja – Brunnentests Schritt für Schritt (steril) | Ja | Nein |
| Wundreinigung | Nicht erforderlich | Erforderlich | Erforderlich |
| Kosten pro Teller | ab 59 € | ~€0 | 50–80 € |
| Mikroelektroden-Array (MEA) | Kompatibel | Alternative Methode | Alternative Methode |
| Veröffentlichungseignung | Ja | Begrenzt | Ja |
ScratchMaker-Platten sind mit der Microelectrode Array (MEA)-Technologie kompatibel und bieten eine präzise Alternative zu Einsteck- oder manuellen Kratzmethoden für elektrische Migrationsmessungen. Da die Wundposition durch die Lichtmaske präzise definiert wird, befindet sich die MEA-Elektrode immer an derselben Position relativ zur Wunde – dies macht elektrische Migrationsmessungen wesentlich reproduzierbarer und valider.
ScratchMaker-Mikroplatten für Scratch-Assays sind für die direkte Verwendung mit dem zenCELL owl Inkubations-Imager konzipiert. Legen Sie die Platte ein, drücken Sie Start – das System erfasst jede Kavität, jede Stunde, automatisch.
Vollautomatische photochemische Wundgenerierung für unsere Scratch-Assay-Platten – 96 identische Wunden in unter 60 Sekunden. Derzeit in der Prototypenentwicklung.
Alle Vertiefungen gleichzeitig in einem Schritt mittels Infrarot- oder sichtbarer Beleuchtung beleuchten. Kompatibel mit allen ScratchMaker-Scratch-Assay-Platten – 24-Well und 96-Well. Vorabzugang auf Anfrage.
Antworten auf die häufigsten Fragen zu Lichtquellen, Wundgeometrie, Plattenverwendung und Kompatibilität.
Preisliste, Protokoll-PDF und Musterbestellung für ScratchMaker Kratztest-Platten – kontaktieren Sie uns direkt.
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Sehen Sie sich das Live-Bild der zenCELL-Eule im Brutkasten an. Verfügbar.
