ScratchMaker scratch assay plates feature photosensitizer-coated bottoms for standardized, reproducible wound healing assays. Available in 6-, 24-, and 96-well format. Requires a fluorescence microscope with blue/violet excitation (~385-408 nm, DAPI channel) – 3 cm distance, 60 sec per well. No washing step or medium change required.
For new customers: we create a personal offer based on your format and quantity needs.
The method you use to create a wound determines what biology you can study. Not all scratch assay plates are equal — the wound type matters. Études sur les essais de migration cellulaire montrent systématiquement que la pertinence physiologique est le différenciateur critique entre les modèles de plaies basés sur des inserts et les modèles de plaies photochimiques.


Most labs still create scratch wounds by dragging a pipette tip across the monolayer by hand. This mechanically ruptures cells at the wound edge — width, angle, and depth vary with every pass, every operator, every plate. ScratchMaker scratch assay plates replace this manual step entirely with a precisely defined, reproducible photochemical wound.

"Les cellules, lorsqu'elles se déplacent vers la plaie, non seulement la referment, mais digèrent également les corps cellulaires qui se trouvent sur leur chemin. Nous pensons donc que cela imite fidèlement la situation physiologique, la situation en temps réel, ce qui se passe au niveau biologique."
— Retour du chercheur, démo live zenCELL owl · juin 2026UV-A/visible light (wavelength typically ~340–408 nm). Standard fluorescence microscopes with Hg-vapour lamp (DAPI filter cube) or 405 nm laser are fully compatible. Photosensitizer absorption maximum: ~395 nm. No dedicated UV lamp or laser required — exposure time 20–60 seconds per well.
Environ 12 000 entrées PubMed impliquent des tests de grattage – la plupart réalisés manuellement avec des pointes de pipette. La variabilité inter-essais est la principale limitation citée dans les publications sur les essais de cicatrisation des plaies.
Les éraflures des pipettes manuelles varient considérablement en fonction de la pression de l'opérateur, de l'angle et de la taille de la pointe, rendant la quantification peu fiable.
Les résultats ne peuvent pas être directement comparés entre les expériences, les points temporels ou les opérateurs – ce qui détruit la puissance statistique.
Le manque de standardisation est une raison fréquente de rejet dans l'évaluation par les pairs des études sur la migration et la cicatrisation des plaies.
96 rayures manuelles par plaque sont fastidieuses et sujettes aux erreurs – un criblage à haut débit n'est pas réaliste.
La pointe de la pipette déchire physiquement les cellules au bord de la plaie, générant des débris incontrôlés et des réponses au stress qui confondent les mesures de migration.
Chaque puits est gratté à un moment légèrement différent et avec un mouvement de main légèrement différent – le dérive du timing et de la technique s'accumule sur une plaque.
Most labs start with the scratch assay plates alone and grow into the full ScratchMaker workflow step by step.
Vous générez des plaies reproductibles par essai de grattage photochimique – imaginer manuellement chaque plaque sous votre microscope à fluorescence.
Votre plaque ScratchMaker se trouve à l'intérieur de l'owl zenCELL, capturant chaque puits automatiquement sur 24 à 72 heures – aucune imagerie manuelle nécessaire.
La quantification standard n'est pas suffisante ? Nous pouvons construire un algorithme d'analyse personnalisé, adapté à votre type de cellules, à la géométrie de la plaie ou au résultat – parlez-nous de votre projet.
Available in 6-, 24-, and 96-well format. Order plates and masks separately or as a complete Starter Kit. Individual sample offers available for new customers.

Photosensitizer-coated glass bottom plates for standardized, reproducible wound healing assays. Available in 6-, 24-, and 96-well format. No washing step or medium change required after light exposure.

The light mask clips under the ScratchMaker plate and defines exactly where the photosensitizer is activated. Ensures identical wound geometry across all wells, all experiments, all operators. One mask per format — reusable.

Everything you need to run your first standardized scratch assay. Includes ScratchMaker plates in your chosen format, the matching light mask, and a step-by-step protocol. Up to 50% off for new customers.
Ideal for larger cell populations, higher cell input, or applications requiring more image area per well. Compatible with most brightfield and fluorescence microscopes.
The standard format for scratch assay experiments. Fits directly into the zenCELL owl 24-channel imager. Best balance between throughput and image quality.
For high-throughput screening applications. Compatible with zenCELL owl XYZ SCAN stage add-on. Screen up to 96 conditions in a single experiment.
All ScratchMaker plates and masks are available for individual sample offers. Contact us at info@innome.de with your format, quantity, and institution — we will create a personal quote within 24 hours. New customers receive up to 50% off their first Starter Kit order.
ScratchMaker plates with integrated Microelectrode Array (MEA) compatibility — precisely defined wound position relative to the electrode for electrical cell migration measurements. Contact us for early access.
From confluent monolayer to defined photochemical wound – a standardized workflow in four steps. Compatible with 6-, 24-, and 96-well formats.
Seed cells, incubate to ≥95% confluency
Mask clips under the plate, defines exposure zone
Blue/violet light (~408 nm, DAPI channel), 3 cm distance, per well
No washing, no medium change – ready to go
Ensemencez vos cellules sur la plaque de test de scratch ScratchMaker à la densité appropriée. Incubez jusqu’à ce que la confluence atteigne ≥95 % – généralement entre 16 et 24 heures, selon la lignée cellulaire.
Clip the ScratchMaker light mask onto the underside of the well plate. The mask acts as holder and light guide – it defines exactly which area of each well will be exposed.
Place each well under your fluorescence microscope light source for 60 seconds at a distance of 3 cm. The blue/violet excitation light resonantly activates the photosensitizer embedded in the glass coating, generating singlet oxygen (¹O₂) precisely within the illuminated area. This induces localized cell death only where the light hits – cells just outside the exposed zone remain completely unaffected.
The scratch assay plate is ready immediately after light exposure. No washing or medium change is required – cells remain in their original medium. Place directly under your microscope or into the zenCELL owl and start live-cell monitoring.

Fonctionne avec Plaques 6 puits, 24 puits et 96 puits Plaques de mesure "scratch assay" ScratchMaker. Le même système de masque lumineux s'applique à tous les formats : clipser, exposer, commencer l'imagerie.
Une comparaison directe des trois approches les plus courantes d'essais de cicatrisation des plaies – et pourquoi les plaques d'essais de type grattage photochimique produisent les données les plus physiologiquement pertinentes.
| Fonctionnalité | Plaques ScratchMaker | Pointe de pipette | Insert Ibidi |
|---|---|---|---|
| Type de blessure | Mort cellulaire photochimique | Rupture mécanique | Écart – pas de mort cellulaire |
| Pertinence physiologique | Élevé – mime in vivo | Modéré | Faible – aucun dégagement de débris |
| Élimination des débris cellulaires | Oui, zone définie | Oui, sans contrôle | Non |
| Insérer le risque de détachement | Aucun insert | Aucun insert | Oui – après plus de 2 heures |
| Reproductibilité de Scratch | Haut | Faible (±30–60%) | Haut |
| Plaque de 6 puits | Oui | Oui | Oui |
| Plaque 24 puits | Oui | Oui | Oui |
| Plaque de 96 puits | Oui | Laborieux | Oui |
| Exigence de microscope | Microscope fluorescent (min.) · Distance de 3 cm | N'importe quel | N'importe quel |
| Utilisation de la plaque partielle | Oui – exposer les puits étape par étape (stérile) | Oui | Non |
| Lavage après plaie | Pas requis | Obligatoire | Obligatoire |
| Coût par assiette | à partir de 59 € | ~€0 | 50–80 € |
| Réseau de microélectrodes (RME) | Compatible | Méthode alternative | Méthode alternative |
| Adaptation à la publication | Oui | Limité | Oui |
Les plaques ScratchMaker sont compatibles avec la technologie Microelectrode Array (MEA) et offrent une alternative précise aux méthodes de grattage manuelles ou basées sur des inserts pour les mesures de migration électrique. Comme la position de la plaie est précisément définie par le masque lumineux, l'électrode MEA est toujours située à la même position par rapport à la plaie, ce qui rend les mesures de migration électrique beaucoup plus reproductibles et valides.
Les plaques de test de rayure ScratchMaker sont conçues pour fonctionner directement avec l'imageur d'incubateur zenCELL owl. Placez la plaque à l'intérieur, appuyez sur démarrer – le système capture chaque puits, chaque heure, automatiquement.
Génération entièrement automatisée de plaies photochimiques pour nos plaques de scratch assay – 96 plaies identiques en moins de 60 secondes. Actuellement en développement de prototype.

Illuminate all wells simultaneously in one step using UV-A/visible light (~385–408 nm) illumination. Compatible with all ScratchMaker scratch assay plates – 24-well and 96-well. Early access on request.
Réponses aux questions les plus courantes sur les sources lumineuses, la géométrie des plaies, l'utilisation des plaques et la compatibilité.
A washing step is not strictly required — cells remain in their original medium and the plate is ready for imaging immediately after light exposure.
However, many researchers perform a medium change before and/or after illumination to remove floating dead cells and improve image quality, as well as to wash out any potentially generated by-products.
When adding reagents such as migration inhibitors or stimulants, a medium change is recommended to introduce them at a defined time point relative to wound creation — either before or after illumination depending on your experimental design.
Protocol guidance validated in collaboration with Stefanie Michaelis, Fraunhofer EMFT / University of Regensburg.
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