ScratchMaker · Assay Plates & Light Masks

Scratch-Assay-Platten
Physiologisch relevanter als Einsätze

ScratchMaker scratch assay plates feature photosensitizer-coated bottoms for standardized, reproducible wound healing assays. Available in 6-, 24-, and 96-well format. Requires a fluorescence microscope with blue/violet excitation (~385-408 nm, DAPI channel) – 3 cm distance, 60 sec per well. No washing step or medium change required.

6-Well-Platte
24-Well-Platte
96-Well-Platte
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Die Wissenschaft

Warum diese Scratch-Assay-Platten bessere Daten als Insert-Modelle liefern

The method you use to create a wound determines what biology you can study. Not all scratch assay plates are equal — the wound type matters. Studien zur Zellmigration. konsequent aufzeigen, dass die physiologische Relevanz der entscheidende Unterschied zwischen Insert-basierten und photochemischen Wundmodellen ist.

Physiologische Wundheilung mit photochemischem Zelltod – ScratchMaker-Kratztestplatten
ScratchMaker Photochemisches Verfahren

Echte Zelltod – echte Wundheilung

UV-A/visible light (~395 nm) activates photosensitizer coating → singlet oxygen → true localized cell death
Wandernde Zellen müssen abgestorbene Zellkörper entfernen – genau wie bei der Wundheilung in vivo.
Ahmt die physiologische Situation auf zellulärer und biologischer Ebene genau nach
Kein Insert – kein Ablösungsrisiko, keine schwebenden Partikel im Medium
Definierte Wundgeometrie, reproduzierbar in allen Wells und Experimenten
Compatible with other TC treatments for specific cell lines
Ibidi Kulturschälchen Deckgläser im 24-Well-Platte – auf Einsätzen basierende Kratztestmethode
Einschaltungsmethode (z.B. Ibidi)

Eine Lücke – keine Wunde

Zellen werden beim Aussäen physisch ausgeschlossen – es kommt nicht zu einem tatsächlichen Zelltod.
Anwandernde Zellen schließen eine saubere Lücke ohne Zelldrifts, um aufzuräumen.
Nachahmt keine physiologische Wundheilung in vivo
Nach mehr als 2 Stunden können sich Einsätze lösen – Zellen treiben frei im Nährmedium
50–80 € pro Teller, Einweg, keine Teilnutzung von Vertiefungen
Die dritte Option

Manuelle Pipettenwundung – die gängigste, am wenigsten kontrollierte Methode

Most labs still create scratch wounds by dragging a pipette tip across the monolayer by hand. This mechanically ruptures cells at the wound edge — width, angle, and depth vary with every pass, every operator, every plate. ScratchMaker scratch assay plates replace this manual step entirely with a precisely defined, reproducible photochemical wound.

Manuelle Pipettierung zur Wundinduktion in Monolagen von Zellen – unkontrollierte Kratztestmethode im Vergleich zu ScratchMaker Kratztestplatten

"Die Zellen, wenn sie sich zur Wunde bewegen, schließen nicht nur die Wunde, sondern verdauen auch die Zellkörper, die sich auf dem Weg befinden. Wir glauben daher, dass dies die physiologische Situation, die Echtzeitsituation, die auf biologischer Ebene stattfindet, sehr genau nachahmt."

— Forscherfeedback, zenCELL owl Live-Demo · Juni 2026
Light source note

UV-A/visible light (wavelength typically ~340–408 nm). Standard fluorescence microscopes with Hg-vapour lamp (DAPI filter cube) or 405 nm laser are fully compatible. Photosensitizer absorption maximum: ~395 nm. No dedicated UV lamp or laser required — exposure time 20–60 seconds per well.

Warum Standardisieren?

Das Problem mit manuellen Pipettenkratzern – warum standardisierte Scratch-Assay-Platten wichtig sind

Rund 12.000 PubMed-Einträge beinhalten Scratch-Assays – die meisten davon werden manuell mit Pipettenspitzen durchgeführt. Die interassay-Variabilität ist die am häufigsten genannte Einschränkung in Publikationen zu Wundheilungsassays.

±30–60% Breitenabweichung

Die Kratzer bei manuellen Pipetten variieren erheblich je nach Anpressdruck des Bedieners, Winkel und Pipettenspitzen-Größe, was eine Quantifizierung unzuverlässig macht.

Nicht reproduzierbar

Die Ergebnisse sind nicht direkt zwischen Experimenten, Zeitpunkten oder Bedienern vergleichbar – dies vernichtet die statistische Aussagekraft.

Kritik des Gutachters

Der Mangel an Standardisierung ist ein häufiger Grund für die Ablehnung von Studien zur Migration und Wundheilung im Peer-Review-Verfahren.

96-Well nicht skalierbar

96 manuelle Kratzer pro Platte sind zeitaufwendig und fehleranfällig – Hochdurchsatz-Screening ist nicht realistisch.

Mechanische Zellaufbrechung

Die Pipettenspitze reißt Zellen am Wundrand physisch auf, was zu unkontrollierten Trümmern und Stressreaktionen führt, die Migrationsmessungen verfälschen.

Betreiber & Zeitverschiebung

Jeder Brunnen wird in einem leicht unterschiedlichen Moment und mit einer leicht unterschiedlichen Handbewegung eingeritzt – Timing und Technik driften über eine Platte hinweg.

Ihr heutiges Setup

Arbeiten Sie bereits mit ScratchMaker? Hier ist, was Sie als Nächstes hinzufügen sollten

Most labs start with the scratch assay plates alone and grow into the full ScratchMaker workflow step by step.

Verwendung von ScratchMaker-Platten mit Ihrem Fluoreszenzmikroskop

Sie erstellen reproduzierbare, photochemische Kratzwunden – und bilden jede Platte manuell unter Ihrem Fluoreszenzmikroskop ab.

Schritt 2

Beobachten Sie bereits die Wundheilung mit zenCELL owl?

Die ScratchMaker-Platte befindet sich in der zenCELL-Eule und erfasst alle Wells automatisch über 24–72 Stunden – keine manuelle Bildgebung erforderlich.

Wünschen Sie einen benutzerdefinierten Algorithmus zur Wundversorgung?

Ist die Standardquantifizierung nicht ausreichend? Wir können einen kundenspezifischen Analysealgorithmus entwickeln, der auf Ihren Zelltyp, Ihre Wundgeometrie oder Ihr Ausleseverfahren zugeschnitten ist – erzählen Sie uns von Ihrem Projekt.

Produkte & Preise

ScratchMaker Plates, Light Masks & Starter Kits

Available in 6-, 24-, and 96-well format. Order plates and masks separately or as a complete Starter Kit. Individual sample offers available for new customers.

ScratchMaker scratch assay plate – photosensitizer-coated glass bottom, 24-well format
Scratch Assay Plate

ScratchMaker Plate

Photosensitizer-coated glass bottom plates for standardized, reproducible wound healing assays. Available in 6-, 24-, and 96-well format. No washing step or medium change required after light exposure.

Formate6-Well · 24-Well · 96-Well
UntenGlas mit Photosensibilisator beschichtet
Light source~385–408 nm (DAPI channel)
Exposure60 sec · 3 cm distance
WaschvorgangNicht erforderlich
Teilweise NutzungYes – well by well
6-Well (1 plate)€59
24-Well (1 plate)€59
96-Well (1 plate)€69
Bundle discountsavailable
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Erforderlich
ScratchMaker light mask – clips under 24-well plate, defines wound geometry for scratch assay
Included in Starter Kit
Light Mask

ScratchMaker Lichtmaske

The light mask clips under the ScratchMaker plate and defines exactly where the photosensitizer is activated. Ensures identical wound geometry across all wells, all experiments, all operators. One mask per format — reusable.

Compatible with6-Well · 24-Well · 96-Well plates
Wound geometryDefined by mask aperture
WiederverwendbarJa
AttachmentClips under plate — no adhesive
SterilizableJa
24-Well mask (1×)€200
6-Well / 96-Well mask€200
Included in Starter Kit✓ Ja
Request Quote →
ScratchMaker Starter Kit – scratch assay plate with light mask, 24-well format
Best Value
Starter Kit

ScratchMaker Starter-Kit

Everything you need to run your first standardized scratch assay. Includes ScratchMaker plates in your chosen format, the matching light mask, and a step-by-step protocol. Up to 50% off for new customers.

IncludesPlates + Light Mask + Protocol
Formate6-Well · 24-Well · 96-Well
New customer discountup to 50% off
Protokoll PDFInbegriffen
SupportSetup call included
Starter Kit 6-Well / 24-Well€459
Starter Kit 96-Well€529
New customer discountup to 50% off
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Available Formats

Choose Your Well Format

6-Well-Platte Ø 35 mm per well

Ideal for larger cell populations, higher cell input, or applications requiring more image area per well. Compatible with most brightfield and fluorescence microscopes.

€59 / plate
24-Well-Platte Most popular · Ø 16 mm per well

The standard format for scratch assay experiments. Fits directly into the zenCELL owl 24-channel imager. Best balance between throughput and image quality.

€59 / plate
96-Well-Platte High-throughput · Ø 6 mm per well

For high-throughput screening applications. Compatible with zenCELL owl XYZ SCAN stage add-on. Screen up to 96 conditions in a single experiment.

€69 / plate
Ordering & Samples

All ScratchMaker plates and masks are available for individual sample offers. Contact us at info@innome.de with your format, quantity, and institution — we will create a personal quote within 24 hours. New customers receive up to 50% off their first Starter Kit order.

Demnächst

ScratchMaker for MEA Systems

ScratchMaker plates with integrated Microelectrode Array (MEA) compatibility — precisely defined wound position relative to the electrode for electrical cell migration measurements. Contact us for early access.

Register Interest →
Schrittweises Protokoll

Wie führt man einen Scratch-Assay mit ScratchMaker-Platten durch

From confluent monolayer to defined photochemical wound – a standardized workflow in four steps. Compatible with 6-, 24-, and 96-well formats.

1

Seed & Grow

Seed cells, incubate to ≥95% confluency

2

Clip Light Mask

Mask clips under the plate, defines exposure zone

3

Expose – 60 sec

Blue/violet light (~408 nm, DAPI channel), 3 cm distance, per well

4

Image Immediately

No washing, no medium change – ready to go

1
Zellsaat & Erreichen der Konfluenz

Säen Sie Ihre Zellen in der entsprechenden Dichte auf die ScratchMaker-Scratch-Assay-Platte aus. Inkubieren Sie die Zellen, bis eine Konfluenz von ≥95 % erreicht ist – je nach Zelllinie dauert dies in der Regel 16–24 Stunden.

Hinweis: Die photosensibilisierende Beschichtung ist bereits in den Glasboden eingelassen – keine zusätzliche Vorbereitung oder Beschichtung erforderlich.
2
Leuchtmaske unterhalb der Platte beschneiden

Befestigen Sie die ScratchMaker-Lichtmaske an der Unterseite der Wellplatte. Die Maske dient als Halterung und Lichtleiter – sie definiert exakt, welcher Bereich jedes Wells belichtet wird.

Schlüsselpunkt: The mask clips securely beneath the plate. Position is fixed and identical across all wells.

Place each well under your fluorescence microscope light source for 60 seconds at a distance of 3 cm. The blue/violet excitation light resonantly activates the photosensitizer embedded in the glass coating, generating singlet oxygen (¹O₂) precisely within the illuminated area. This induces localized cell death only where the light hits – cells just outside the exposed zone remain completely unaffected.

Ergebnis: Eine präzise definierte Wunde mit abgestorbenen Zellkörpern an Ort und Stelle – exakt wie bei der physiologischen Wundheilung. Keine mechanische Beschädigung, kein Ritzinstrument erforderlich.

The scratch assay plate is ready immediately after light exposure. No washing or medium change is required – cells remain in their original medium. Place directly under your microscope or into the zenCELL owl and start live-cell monitoring.

zenCELL Eule Set up continuous time-lapse imaging over 24–72 h. Wound closure is quantified automatically.
Real result – physiological wound generation with zenCELL owl
Physiological wound generation with zenCELL owl – defined geometry, cell debris visible
Physiologically generated wound – clean edges, defined geometry, cell debris visible

Funktioniert mit 6-Well, 24-Well und 96-Well ScratchMaker Scratch-Assay-Platten. Das gleiche Lichtmaskensystem gilt für alle Formate – aufstecken, belichten, mit der Bildaufnahme beginnen.

60 Sekunden
Exposition pro Vertiefung
0
Waschschritte
4
Schritte insgesamt
Alternative

ScratchMaker Scratch Assay Plates versus Pipette versus Ibidi Einsätze

Ein direkter Vergleich der drei gängigsten Ansätze für Wundheilungs-Assays – und warum photochemische Scratch-Assay-Platten die physiologisch relevantesten Daten liefern.

MerkmalScratchMaker PlattenPipettenspitzeIbidi Einsatz
WundartPhotochemischer ZelltodMechanische RupturLücke – keine Zellzersetzung
Physiologische RelevanzHoch – simuliert in vivoMäßigGering – keine Trümmerbeseitigung
Entfernung von ZelltrümmernJa, definierte ZoneJa, unkontrolliertNein
Schadensrisiko einfügenKeine EinfügungKeine EinfügungJa – nach über 2 Stunden
Reproduzierbarkeit von ScratchHochNiedrig (±30–60%)Hoch
6-Well-PlatteJaJaJa
24-Well-PlatteJaJaJa
96-Well-PlatteJaMühsamJa
Anforderung an ein MikroskopFluoreszenzmikroskop (min.) · 3 cm AbstandIrgendeinIrgendein
TeilprothesenverwendungJa – Brunnentests Schritt für Schritt (steril)JaNein
WundreinigungNicht erforderlichErforderlichErforderlich
Kosten pro Tellerab 59 €~€050–80 €
Mikroelektroden-Array (MEA)KompatibelAlternative MethodeAlternative Methode
VeröffentlichungseignungJaBegrenztJa
Zusätzlicher Vorteil

Kompatibel mit Microelectrode Array (MEA)-Systemen

ScratchMaker-Platten sind mit der Microelectrode Array (MEA)-Technologie kompatibel und bieten eine präzise Alternative zu Einsteck- oder manuellen Kratzmethoden für elektrische Migrationsmessungen. Da die Wundposition durch die Lichtmaske präzise definiert wird, befindet sich die MEA-Elektrode immer an derselben Position relativ zur Wunde – dies macht elektrische Migrationsmessungen wesentlich reproduzierbarer und valider.

Weiterführen

Nutzen Sie Ihre Scratch-Assay-Platten mit Echtzeit-Wundschlussüberwachung – automatisch und im Inkubator

ScratchMaker-Mikroplatten für Scratch-Assays sind für die direkte Verwendung mit dem zenCELL owl Inkubations-Imager konzipiert. Legen Sie die Platte ein, drücken Sie Start – das System erfasst jede Kavität, jede Stunde, automatisch.

  • Kontinuierliche Echtzeitbildgebung – jede Bohrung, jeder Zeitpunkt, unbeaufsichtigt
  • Die Kratzposition passt exakt Über zenCELL Eulen-Kameramodule – keine Neupositionierung erforderlich
  • Automatisierte Wundheilungsanalyse mit KI-Software – Wundfläche quantifiziert pro Zeitpunkt
  • Vollständiger Zeitraffer-Export – 24 h, 48 h, 72 h Migrationsfilme bereit zur Veröffentlichung
  • Alle Formate kompatibel – 6-, 24- und 96-Well-Scratch-Assay-Platten im selben System
Erfahren Sie mehr über zenCELL owl
24
Gleichzeitig abgebildete Kanäle
72 Stunden
Kontinuierliche Überwachung, freihändig
15×
Günstiger als Incucyte S3
In Entwicklung

ScratchMaker Gerät – Vollautomatisch

Vollautomatische photochemische Wundgenerierung für unsere Scratch-Assay-Platten – 96 identische Wunden in unter 60 Sekunden. Derzeit in der Prototypenentwicklung.

ScratchMaker-Geräteprototyp – vollautomatische photochemische Wundgenerierung für Scratch-Assay-Platten
Demnächst

ScratchMaker Gerät

Illuminate all wells simultaneously in one step using UV-A/visible light (~385–408 nm) illumination. Compatible with all ScratchMaker scratch assay plates – 24-well and 96-well. Early access on request.

Frühzeitiger Zugang
FAQ

Häufig gestellte Fragen zu ScratchMaker-Scratch-Assay-Platten

Antworten auf die häufigsten Fragen zu Lichtquellen, Wundgeometrie, Plattenverwendung und Kompatibilität.

Welche Lichtquelle benötige ich, um die ScratchMaker Kratztestplatten zu aktivieren?
You need a fluorescence microscope as a minimum requirement. UV-A/visible light (~395–408 nm, e.g. DAPI channel of an Hg-vapour lamp or a 405 nm laser) resonantly excites the photosensitizer, generating singlet oxygen (¹O₂) that locally kills cells only in the illuminated area. Position the light source at 3 cm distance and expose each well for 20–60 seconds depending on your light source intensity and cell type. No dedicated UV lamp, laser, or additional hardware required.
Wie groß ist die Wunde, die auf den ScratchMaker-Kratztestplatten erzeugt wird?
Die Größe und Geometrie der Wunde werden durch die ScratchMaker-Lichtmaske bestimmt, die unter die Platte geklemmt wird und für alle Vertiefungen eines bestimmten Formats (6-, 24- oder 96-Well) identisch ist. Dadurch erhalten Sie in jeder Vertiefung eine präzise definierte, reproduzierbare Wundfläche – im Gegensatz zu manuellen Pipettenkratzern, bei denen die Breite um ±30–60 % variiert.
Werden ScratchMaker Scratch-Assay-Platten für meine Zelllinie funktionieren?
ScratchMaker scratch assay plates work with adherent cell lines commonly used in wound healing and migration assays. Cells should reach ≥95% confluency before exposure. If you're unsure whether your specific cell line is suitable, get in touch.
Können nur einige Wells einer ScratchMaker-Platte verwendet und die restlichen später genutzt werden?
Yes. You can expose and use individual wells step by step, as long as you work under sterile conditions. Unused wells remain intact and can be used in a later, independent experiment.
Ist die ScratchMaker Lichtmaske mit allen Plattenformaten kompatibel?
The light mask is available for 6-, 24-, and 96-well formats and is matched to the corresponding ScratchMaker plate. Each light mask is reusable (70% EtOH or autoclave sterilization) and represents a one-time investment.
Do I need to wash the plate or change the medium after creating the wound?

A washing step is not strictly required — cells remain in their original medium and the plate is ready for imaging immediately after light exposure.

However, many researchers perform a medium change before and/or after illumination to remove floating dead cells and improve image quality, as well as to wash out any potentially generated by-products.

When adding reagents such as migration inhibitors or stimulants, a medium change is recommended to introduce them at a defined time point relative to wound creation — either before or after illumination depending on your experimental design.

Protocol guidance validated in collaboration with Stefanie Michaelis, Fraunhofer EMFT / University of Regensburg.

Sind ScratchMaker-Kratztestplatten mit Mikroelektroden-Array (MEA)-Systemen kompatibel?
Yes. Because the wound position is precisely defined by the light mask, the MEA electrode is always located at the same position relative to the wound – making electrical migration measurements significantly more reproducible.
Benötige ich eine zenCELL owl zur Verwendung von ScratchMaker-Kratztestplatten?
No – ScratchMaker scratch assay plates and light masks work independently with any fluorescence microscope. The zenCELL owl is an optional addition that automates imaging and wound closure analysis over 24–72 h.
Wie wird der Wundschluss quantifiziert?
Wound Closure (%) = (Initial wound area − Current wound area) / Initial wound area × 100. When using the zenCELL owl, this calculation is performed automatically by the AI software for every well and time point.
What is the scientific basis for the photochemical wounding mechanism?
The method relies on photosensitizers embedded in a biocompatible coating on the well bottom. Resonant excitation by UV-A/visible light (~395 nm) generates singlet oxygen (¹O₂) locally, inducing cell death only within the illuminated area. This mechanism is described in peer-reviewed research published in Scientific Reports (2024) by Azzam et al., Fraunhofer EMFT / University of Regensburg / ibidi.

Sind Sie bereit, Ihre Scratch-Assay-Platten zu standardisieren?

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