ScratchMaker scratch assay plates feature photosensitizer-coated glass bottoms for standardized, reproducible wound healing assays. Available in 6-, 24-, and 96-well format. Requires a fluorescence microscope with blue/violet excitation (~408 nm, DAPI channel) – 3 cm distance, 60 sec per well. No washing step or medium change required.
For new customers: we create a personal offer based on your format and quantity needs.
Die Methode, mit der Sie eine Wunde erzeugen, bestimmt, welche Biologie Sie untersuchen können. Nicht alle Kratztestplatten sind gleich – die Art der Wunde spielt eine Rolle. Studien zur Zellmigration. konsequent aufzeigen, dass die physiologische Relevanz der entscheidende Unterschied zwischen Insert-basierten und photochemischen Wundmodellen ist.
"Die Zellen, wenn sie sich zur Wunde bewegen, schließen nicht nur die Wunde, sondern verdauen auch die Zellkörper, die sich auf dem Weg befinden. Wir glauben daher, dass dies die physiologische Situation, die Echtzeitsituation, die auf biologischer Ebene stattfindet, sehr genau nachahmt."
— Forscherfeedback, zenCELL owl Live-Demo · Juni 2026Rund 12.000 PubMed-Einträge beinhalten Scratch-Assays – die meisten davon werden manuell mit Pipettenspitzen durchgeführt. Die interassay-Variabilität ist die am häufigsten genannte Einschränkung in Publikationen zu Wundheilungsassays.
Die Kratzer bei manuellen Pipetten variieren erheblich je nach Anpressdruck des Bedieners, Winkel und Pipettenspitzen-Größe, was eine Quantifizierung unzuverlässig macht.
Die Ergebnisse sind nicht direkt zwischen Experimenten, Zeitpunkten oder Bedienern vergleichbar – dies vernichtet die statistische Aussagekraft.
Der Mangel an Standardisierung ist ein häufiger Grund für die Ablehnung von Studien zur Migration und Wundheilung im Peer-Review-Verfahren.
96 manuelle Kratzer pro Platte sind zeitaufwendig und fehleranfällig – Hochdurchsatz-Screening ist nicht realistisch.
Die Pipettenspitze reißt Zellen am Wundrand physisch auf, was zu unkontrollierten Trümmern und Stressreaktionen führt, die Migrationsmessungen verfälschen.
Jeder Brunnen wird in einem leicht unterschiedlichen Moment und mit einer leicht unterschiedlichen Handbewegung eingeritzt – Timing und Technik driften über eine Platte hinweg.
Unsere Scratch-Assay-Platten verfügen über glasbeschichtete Böden mit Photosensibilisator als Einwegverbrauchsmaterialien, kombiniert mit wiederverwendbaren Präzisionslichtmasken. Erfordert ein Fluoreszenzmikroskop als minimale Lichtquelle.
Ideal für erste Experimente, Zelllinien-Screenings und qualitative Migrationsstudien mit größeren Zellkulturvolumina.
Der Standard für Scratch-Assay-Platten. Optimal für quantitative Migrationsstudien, Medikamententests und Wirkstoff-Screening.
Für Screening-Studien mit vielen gleichzeitigen Bedingungen. Maximale Durchsatzleistung bei konsistenter Reproduzierbarkeit über alle Wells hinweg.
Standard-Mikroplatte mit einzeln verklebten, photosensibilisatorbeschichteten Glasböden. Optimiert für saubere, reproduzierbare photochemische Wundränder in Kratztest-Applikationen.
Präzisionsgefertigte Lichtmaske, die direkt unter die Mikrotiterplatte geklemmt wird. Definiert den IR/VIS-Belichtungsbereich präzise – identische Position in jedem Well, in jedem Experiment. Wiederverwendbar über viele Experimente hinweg.
Alles, was Sie für Ihren ersten reproduzierbaren Scratch-Assay benötigen. Lichtmaske + Scratch-Assay-Platten in einer Box, PDF-Protokoll inklusive. Starten Sie noch heute, kein Setup erforderlich.
Sie müssen nicht alle Wells auf einmal freilegen. Verwenden Sie nur die Wells, die Ihr aktuelles Experiment erfordert – legen Sie sie einzeln und schrittweise frei. Solange Sie unter sterilen Bedingungen arbeiten, bleiben die übrigen Wells intakt und können in nachfolgenden Experimenten verwendet werden. Dies macht jede Scratch-Assay-Platte zu einer kosteneffizienten Ressource für mehrere unabhängige Assays.
Die meisten Labore beginnen mit den reinen Scratch-Assay-Platten und entwickeln sich schrittweise zum vollständigen ScratchMaker-Workflow. Finden Sie heraus, wo Sie stehen – und wie der nächste Schritt typischerweise aussieht.
From confluent monolayer to defined photochemical wound – a standardized workflow in four steps. Compatible with 6-, 24-, and 96-well formats.
Seed cells, incubate to ≥95% confluency
Mask clips under the plate, defines exposure zone
Blue/violet light (~408 nm, DAPI channel), 3 cm distance, per well
No washing, no medium change – ready to go
Säen Sie Ihre Zellen in der entsprechenden Dichte auf die ScratchMaker-Scratch-Assay-Platte aus. Inkubieren Sie die Zellen, bis eine Konfluenz von ≥95 % erreicht ist – je nach Zelllinie dauert dies in der Regel 16–24 Stunden.
Befestigen Sie die ScratchMaker-Lichtmaske an der Unterseite der Wellplatte. Die Maske dient als Halterung und Lichtleiter – sie definiert exakt, welcher Bereich jedes Wells belichtet wird.
Place each well under your fluorescence microscope light source for 60 seconds at a distance of 3 cm. The blue/violet excitation light resonantly activates the photosensitizer embedded in the glass coating, generating singlet oxygen (¹O₂) precisely within the illuminated area. This induces localized cell death only where the light hits – cells just outside the exposed zone remain completely unaffected.
The scratch assay plate is ready immediately after light exposure. No washing or medium change is required – cells remain in their original medium. Place directly under your microscope or into the zenCELL owl and start live-cell monitoring.
Ein direkter Vergleich der drei gängigsten Ansätze für Wundheilungs-Assays – und warum photochemische Scratch-Assay-Platten die physiologisch relevantesten Daten liefern.
| Merkmal | ScratchMaker Platten | Pipettenspitze | Ibidi Einsatz |
|---|---|---|---|
| Wundart | Photochemischer Zelltod | Mechanische Ruptur | Lücke – keine Zellzersetzung |
| Physiologische Relevanz | Hoch – simuliert in vivo | Mäßig | Gering – keine Trümmerbeseitigung |
| Entfernung von Zelltrümmern | Ja, definierte Zone | Ja, unkontrolliert | Nein |
| Schadensrisiko einfügen | Keine Einfügung | Keine Einfügung | Ja – nach über 2 Stunden |
| Reproduzierbarkeit von Scratch | Hoch | Niedrig (±30–60%) | Hoch |
| 6-Well-Platte | Ja | Ja | Ja |
| 24-Well-Platte | Ja | Ja | Ja |
| 96-Well-Platte | Ja | Mühsam | Ja |
| Anforderung an ein Mikroskop | Fluoreszenzmikroskop (min.) · 3 cm Abstand | Irgendein | Irgendein |
| Teilprothesenverwendung | Ja – Brunnentests Schritt für Schritt (steril) | Ja | Nein |
| Wundreinigung | Nicht erforderlich | Erforderlich | Erforderlich |
| Kosten pro Teller | ab 59 € | ~€0 | 50–80 € |
| Mikroelektroden-Array (MEA) | Kompatibel | Alternative Methode | Alternative Methode |
| Veröffentlichungseignung | Ja | Begrenzt | Ja |
ScratchMaker-Platten sind mit der Microelectrode Array (MEA)-Technologie kompatibel und bieten eine präzise Alternative zu Einsteck- oder manuellen Kratzmethoden für elektrische Migrationsmessungen. Da die Wundposition durch die Lichtmaske präzise definiert wird, befindet sich die MEA-Elektrode immer an derselben Position relativ zur Wunde – dies macht elektrische Migrationsmessungen wesentlich reproduzierbarer und valider.
ScratchMaker-Mikroplatten für Scratch-Assays sind für die direkte Verwendung mit dem zenCELL owl Inkubations-Imager konzipiert. Legen Sie die Platte ein, drücken Sie Start – das System erfasst jede Kavität, jede Stunde, automatisch.
Vollautomatische photochemische Wundgenerierung für unsere Scratch-Assay-Platten – 96 identische Wunden in unter 60 Sekunden. Derzeit in der Prototypenentwicklung.
Alle Vertiefungen gleichzeitig in einem Schritt mittels Infrarot- oder sichtbarer Beleuchtung beleuchten. Kompatibel mit allen ScratchMaker-Scratch-Assay-Platten – 24-Well und 96-Well. Vorabzugang auf Anfrage.
Antworten auf die häufigsten Fragen zu Lichtquellen, Wundgeometrie, Plattenverwendung und Kompatibilität.
Preisliste, Protokoll-PDF und Musterbestellung für ScratchMaker Kratztest-Platten – kontaktieren Sie uns direkt.
Kontaktieren Sie uns
English English
Deutsch
Français
Español
简体中文
